| 培養基名稱 | LB培養基、LB肉湯培養基、LB液體培養基、LB固體培養基、LB瓊脂培養基、LB平板培養基 |
|---|---|
| 英文名稱: | LB Broth, Miller; Luria-Bertani Broth, Miller |
| 培養基類型: | 營養型培養基 |
| 產品目錄號: | M238-01、M238-02、M871-01（LB瓊脂250g）、M871-02（LB瓊脂500g） |
| 產品規格: | 250g / 500g |
| 保存條件: | 密封，陰涼干燥處保存。制備好的培養基2-8°C保存。 |
| 產品性狀: |
麥秸色均一粉末。 液體呈麥秸色或淺琥珀色。 |
| ATCC或BD培養基: | ATCC培養基1065，BD244620培養基 |
| 注意事項: | 避免攝入、呼入、皮膚接觸。配制時在通風櫥中進行，戴口罩 、手套、護目鏡。 |
| 相關產品: | -- |
產品描述：
LB培養基（LB Broth, Miller）,也稱為LB肉湯或者LB液體培養基。LB培養基是什么培養基？LB培養基是實驗室最常用的非選擇性液體營養培養基，用于培養和傳代大腸桿菌及其重組菌株，同時用于培養多種微生物，例如金葡菌，枯草桿菌等。LB培養基的用途：
LB培養基用于培養和傳代大腸桿菌及其重組菌株。LB培養基的原理：
胰蛋白胨提供微生物生長所需的氮源和碳源。酵母提取物提供微生物生成所需的各種維生素（包括維生素B）和微量元素。氯化鈉提供細胞轉運用的鹽離子和滲透壓平衡功能。LB培養基配方與LB培養基配制方法
LB培養基成分如下：| 培養基成分： | 含量：/L |
|---|---|
| 胰蛋白胨 | 10.0 g |
| 酵母提取物 | 5.0 g |
| 氯化鈉 | 10.0 g |
| pH | 7.0± 0.2 |
配制方法：
1. 稱取25g本品，加1000ml去離子水溶解。
2. 分裝到合適的容器中。
3. 121°C滅菌15min。
4. 上面是LB液體培養基的配方，如果您需要配置LB固體培養基，配方除了上述的LB液體培養基配方以外，需要另外加入15g/L的瓊脂。也可以直接購買我們的LB瓊脂培養基。
LB培養基使用常見問題
1. LB培養基加多少氨芐青霉素？LB培養基（大腸桿菌LB培養基）在用來培養基氨芐抗性大腸桿菌細菌的時候，LB培養基一般加入50-100 ug/ml的氨芐抗生素。常用的LB培養基抗生素工作濃度如下：氨芐霉素（LB培養基氨芐濃度）：100ug/ml, 卡那霉素（LB培養基卡那濃度）100ug/ml, 氯霉素（LB培養基氯霉素濃度）34ug/ml, 四環素（LB培養基四環素濃度）20ug/ml，壯觀霉素100ug/ml.2. LB固體培養基冷卻后如何處理？ LB固體培養基即LB瓊脂培養基（LB培養基固體），是用來配制LB培養基平板的。LB固體培養基在高溫高壓滅菌后，待冷卻到50度左右時，加入需要的篩選用的抗生素，混勻后倒入9mm平板中。平均每個平板中倒入15-20ml，然后等待LB固體培養基冷卻后，就做成了LB平板。
3. LB液體培養基ph怎么調？LB培養基調pH值的時候，使用NaOH 或者稀鹽酸進行調節LB培養基的ph值至7.0左右即可。在實際配置的時候，要求不嚴格的情況下，很多時候不調ph也是可以直接滅菌使用的。
4. LB培養基的滅菌條件是什么？ LB培養基的高壓滅菌條件是121度，滅菌15分鐘。
5. LB培養基顏色是什么？ LB培養基粉末顏色是淡黃色粉末，LB液體培養基是淡黃色透明液體。
6. 半固體LB培養基如何配置？半固體LB培養基被用于噬菌體檢測實驗和穿刺菌的制作。半固體LB培養基只需要加入0.6%至0.7%的瓊脂即可。下面是半固體LB培養基用于噬菌體檢測的一個案例：
Single colonies were picked and incubated in LB broth for about 3 h. Then, 100 μL of the bacterial culture (A600 ca. 0.5) mixed with 5 ml of the molten semi-solid LB agar (0.6%) and over laid on the surface of the LB agar. After 10 min, 10 μL of phage suspension was applied on the bacterial layer and incubated at 37°C overnight. Bacterial sensitivity to phage preparations was established by lysis at the spot where the phage was deposited (Gabrilovich, 1973). Observing confluent, semi-confluent, opaque lysis or individual plaques determined the isolate susceptibility. When the lysis was not possible, the corresponding isolates were determined to be resistant. Each test was repeated thrice.